¿Por qué necesita cambiar las agujas de su jeringa? Uso de jeringas y agujas - página 2. conjunto de jeringa reutilizable

Somos partidarios de no cambiar las agujas de las jeringas ni las lancetas de los escarificadores a la hora especificada en las instrucciones. Y con la llegada de las bombas de insulina, también se sumaron los propietarios de equipos de infusión “de larga duración”. Pero, de hecho, existe una relación directa entre la frecuencia con la que se cambia la aguja de una jeringa, el nivel de compensación de la diabetes y el riesgo de lipodistrofia.

Comencemos con el hecho de que si se usa una aguja repetidamente, el metal que la contiene se deforma. Esto lleva al hecho de que cada uso posterior irá acompañado primero de molestias y luego sensaciones dolorosas. Hay datos de investigaciones que muestran que cuando se usa una aguja de 4 a 5 veces, las sensaciones durante la inyección no cambian. Con el uso repetido posterior, surgen sensaciones desagradables.

Por cierto, el problema con las lancetas es similar. Cuanto más a menudo lo cambies, menos doloroso será el pinchazo. Nuestros dedos ya están sufriendo. No tiene sentido exacerbar su destino usando una lanceta una cantidad increíble de veces.
La necesidad de cambiar la aguja de una jeringa también depende del tipo de agujas que utilice personalmente. Cuanto más delgada sea la aguja, más suave será la punta y con mayor frecuencia será necesario reemplazarla.

Ahora volvamos a la cuestión de la calidad de la compensación. Todo aquí es simplemente estúpido. El hecho es que cuando se usa una aguja, quedan partículas de insulina y sangre que obstruyen la luz. Con cada uso el espacio libre se vuelve más estrecho. Esto significa que la insulina puede permanecer dentro. Aquellos. Puede surgir una situación en la que no se administre toda la dosis de solución.
Por lo general, en tal situación recurren a varios trucos: la inyección se prolonga más, se sueltan algunos clics adicionales, como si estuvieran vacíos, se sacan desde otro ángulo o desplazándose un poco, etc.

A pesar de todas estas intrincadas manipulaciones, no es inmune al hecho de que quedará una gota bastante grande de sustancia en la aguja.
Si de repente surge una situación en la que después de una inyección se forma una gota en la aguja mayor que la cantidad permitida y se da cuenta de que no recibió la dosis requerida de insulina, no entre en pánico y no se inyecte insulina adicional. Para su próxima inyección programada, cambie la aguja. Ahora controle sus niveles de azúcar periódicamente. Por supuesto, no serán muy altos. Pero claramente serán peores de lo habitual.

Según los expertos, el uso prolongado de agujas aumenta el riesgo de lipodistrofia. Esto no es sorprendente. El metal arrugado, las agujas reutilizadas y su falta de esterilidad aumentan el riesgo de lesiones, lo que a su vez puede conducir al desarrollo de patología.
La mejor opción tanto para tu salud como para tu bolsillo es cambiar la aguja a diario. Así, un paquete de 100 piezas durará unos 3 meses.

Uso de jeringas y agujas.

El mayor número de casos conocidos de contaminación bacteriana en condiciones de laboratorio se deben al uso de agujas y jeringas. Para reducir la probabilidad de una inyección fallida, formación de aerosoles o derrame de suspensiones bacterianas, es mejor evitar su uso. Para administrar suspensiones bacterianas a animales a través de la boca o la nariz, se recomienda utilizar una aguja roma o cánula en una jeringa y no se recomienda utilizar una jeringa y una aguja como sustituto de una pipeta.

Existen las siguientes reglas para el uso de agujas y jeringas para inyecciones parenterales.

Utilice una caja biológicamente segura y evite movimientos rápidos innecesarios de la mano que sostiene la jeringa.

Las jeringas de vidrio se revisan en busca de astillas y grietas, y las agujas en busca de mellas y permeabilidad. Esto se hace antes de la esterilización y antes de su uso.

Utilice únicamente jeringas con agujas y asegúrese de que la aguja esté bien colocada. Utilice guantes quirúrgicos u otros guantes de goma. Las jeringas se llenan con cuidado para que haya la menor cantidad posible de burbujas de aire y espuma en la solución recolectada.

El exceso de aire, líquido y burbujas se eliminan sosteniendo la jeringa en posición vertical, en un hisopo de algodón empapado en un desinfectante o en una botella pequeña llena de algodón esterilizado.

La jeringa no se utiliza para introducir líquido infeccioso en un vial abierto o en un tubo de ensayo con el fin de mezclarlo. Solo se permite mezclar con una jeringa si la punta de la aguja está debajo de la superficie del líquido en el tubo.

Si la solución se extrae de un tubo de ensayo con una jeringa, se debe tener cuidado de no contaminar el conector de la aguja, ya que esto puede provocar que material infeccioso entre en contacto con los dedos.

Cuando se retiran la jeringa y la aguja del frasco con tapón de goma, la aguja y el tapón se envuelven en un hisopo de algodón humedecido con un desinfectante adecuado. Si existe peligro de contaminación del material sensible utilizado en el experimento con un desinfectante, utilice un hisopo seco esterilizado, que se coloca inmediatamente en la solución desinfectante.

Durante la vacunación, se coloca la mano del animal detrás de la aguja para evitar pinchazos.

Antes de la vacunación, asegúrese de que el animal esté bien sujeto y tome precauciones en caso de movimientos inesperados.

El lugar de la vacunación antes de la inyección y especialmente después se limpia con un desinfectante.

Después de su uso, las jeringas de vidrio reutilizables sucias con agujas se sumergen en un recipiente con una solución desinfectante y luego se esterilizan en autoclave. Para reducir la posibilidad de contaminación, las agujas deben permanecer en las jeringas hasta el final del autoclave. Las jeringas con agujas se colocan en una bandeja separada, en la que no hay otros materiales usados.

Las agujas y jeringas desechables se colocan en una bandeja con una solución desinfectante y luego se esterilizan en autoclave. Los contenedores etiquetados como "Jeringas y agujas", después de un embalaje adecuado y la destrucción de su contenido, se pueden desechar en un contenedor de residuos normal. Después de la esterilización, las agujas y jeringas se dañan y rompen deliberadamente para que los drogadictos no las utilicen.

En los casos en que después de su uso es necesario colocar la aguja en una funda protectora, se toma con pinzas para reducir la probabilidad de pincharse accidentalmente un dedo. Las jeringas y agujas reutilizables y desechables se colocan en bandejas separadas con desinfectante para evitar problemas al clasificarlas. Nunca se deben colocar jeringas y agujas en bandejas que contengan pipetas u otros objetos de vidrio.

Apertura de contenedores

Los tubos que contienen suspensiones bacterianas deben manipularse con cuidado. Operaciones simples como quitar el tapón de un tubo de ensayo o transferir un cultivo de un recipiente a otro pueden crear aerosoles. Los tubos y los soportes para tubos que contengan material biopeligroso deben estar claramente etiquetados. Para reducir los derrames causados ​​por tubos rotos, se recomienda utilizar soportes para tubos de seguridad en lugar de rejillas convencionales. En esta rejilla de seguridad, cada hueco para tubo de ensayo tiene paredes lo suficientemente altas como para que, si el tubo de ensayo se rompe, todo el contenido permanezca en el hueco. Se forma un aerosol con un alto contenido de líquido agitando vigorosamente cultivos líquidos, mientras que con el movimiento de rotación de los vasos la formación de aerosol es mínima y la suspensión resultante es bastante homogénea. Una vez resuspendido el cultivo líquido, esperar unos minutos antes de abrir el recipiente; esto ayuda a reducir la formación de aerosoles.

La pulverización de aerosol puede ocurrir cuando se sumerge un asa o una aguja caliente esterilizada en un cultivo líquido o una articulación. Para reducir la formación de aerosoles, se deja enfriar el asa ya sea al aire o en contacto con la pared interna del recipiente o la superficie del agar, donde el cultivo no haya crecido previamente. Después de usar el asa y la aguja, se esteriliza calentándolo sobre una llama abierta. Se encuentran disponibles a la venta asas de inóculo desechables que son más fáciles de desinfectar sumergiéndolas en una solución desinfectante que calentándolas.

Al pasar sobre una superficie de agar irregular, el asa o la aguja vibran, lo que provoca la formación de un aerosol. Este problema generalmente no existe si el cultivo se coloca sobre una superficie de agar lisa, por lo que se recomienda que el cultivo no se coloque sobre placas con una superficie de agar desigual.

El agua que aparece en las placas de Petri como resultado de la sinéresis forma una película en la placa invertida entre el borde de la placa y la tapa, que puede contener bacterias viables. Cuando se abre el vaso, esta película se rompe, dando lugar a aerosoles. Las tazas deben abrirse en la caja.

Es menos probable que se liberen aerosoles al abrir botellas con tapones de rosca o tubos sellados con hisopo. Pero esto todavía puede suceder cuando la película entre el borde y la junta se rompe durante la apertura. Los aerosoles se generan cuando se quitan los tapones o tapas de algodón de los matraces, botellas y vasos de centrífuga inmediatamente después de agitar o centrifugar. Es peligroso quitar los tapones que se han mojado como resultado de la posición no vertical del matraz o vaso de centrífuga. Los tapones pueden humedecerse ligeramente durante la centrifugación si se produce una pequeña formación de espuma durante la centrifugación. Por lo tanto, todos los cultivos líquidos que contengan material infeccioso deben abrirse en un gabinete seguro, usando guantes y ropa de laboratorio de manga larga.

Se puede generar un aerosol cuando se abre una ampolla de cultivo líquida o liofilizada sellada, por lo que las ampollas solo deben abrirse en la caja. Al recoger fragmentos de la ampolla se debe tener cuidado de no cortarse los guantes ni las manos, para que el vidrio roto no entre en los ojos, en la cara o quede sin limpiar. Después de abrir la ampolla, la suspensión bacteriana no debe contaminarse con microorganismos extraños o desinfectantes. Esto se logra trabajando en una caja de seguridad usando guantes. Para abrir la ampolla, en primer lugar, haga un corte con una lima cerca del cuello de la ampolla. La ampolla en sí se envuelve en un algodón empapado en un desinfectante y se abre con una rotura en la muesca, después de asegurarse de que se mantenga vertical. Otra forma es hacer una grieta en el lugar de la incisión aplicándole un alambre caliente o una varilla de vidrio, luego envolver la ampolla con un algodón empapado en un desinfectante y abrirla con un descanso. El algodón y la parte superior de la ampolla se arrojan inmediatamente a la solución desinfectante. El contenido de la ampolla se disuelve añadiendo líquido lentamente, intentando evitar la formación de aerosol. La solución se mezcla, asegurándose de que no queden burbujas, y se transfiere al recipiente preparado.

Para facilitar la apertura, se encuentran disponibles ampollas con muescas preaplicadas, pero dichas ampollas son menos confiables: pueden romperse durante la manipulación o el almacenamiento. Las ampollas con cultivos líquidos se abren de la misma forma.

La cosecha de cultivos cultivados con embriones de pollo es muy peligrosa. Cuando se realiza, las cáscaras y bandejas con huevos se ensucian mucho, ambiente y las manos del experimentador. Los trabajos de esta naturaleza deben realizarse en zonas seguras, utilizando a menudo un desinfectante adecuado.

Centrifugación

Al centrifugar suspensiones de bacterias infecciosas, se deben utilizar dedales de seguridad para centrífugas y las centrífugas de mesa solo deben guardarse en gabinetes.

Los vasos y fundas de centrífuga se llenan y abren en una caja de seguridad. Si la centrifugación se realiza fuera de la caja, se utiliza una funda protectora. Una vez lleno y sellado, se limpia o se sumerge en una solución desinfectante. Una vez transcurrido el tiempo requerido, la funda se lava con agua limpia, ya que algunos desinfectantes provocan corrosión.

Antes de la centrifugación, se revisan los vasos y, si se encuentran grietas o bordes desconchados, no se utilizan dichos vasos. Inspeccione cuidadosamente la superficie interior de los manguitos y elimine cualquier rugosidad o partículas adheridas. También se comprueba el estado de las juntas de goma.

Se vierte una solución desinfectante entre el cristal y la funda para que si el cristal se rompe se desinfecte el material. Además, crea una buena absorción de impactos. Se debe tener cuidado para garantizar que el material de cultivo no esté contaminado por el desinfectante. También se recomienda no olvidar que si el vidrio se rompe, debido a la alta concentración de células y a la alta dilución del desinfectante, es posible que el material infeccioso no se desinfecte por completo.

Es mejor no verter el líquido sobrenadante de los vasos de centrífuga, sino succionarlo. Si es necesario drenar, limpie el borde exterior del vaso con una solución desinfectante, ya que si no se hace esto, se puede formar un aerosol en la siguiente etapa.

El vaso de centrífuga se llena de tal manera que el borde, la tapa o el tapón de algodón no se mojen con el cultivo. Las tapas de rosca o las tapas que se envuelven alrededor de los bordes en la parte superior son más seguras que las tapas a presión. En este último caso, suele acumularse algo de líquido entre la tapa y el borde del vaso. Incluso los vasos con tapa de rosca no son seguros: si los bordes están sucios y la tapa no ajusta bien, puede filtrarse algo de líquido a la pared exterior del vaso.

Los vasos y las mangas deben equilibrarse cuidadosamente. No mezcle fundas, vasos e insertos de plástico de diferentes juegos. Si en estos artículos no se indica el peso, es conveniente marcar cada conjunto con una pintura diferente.

El metal del que están hechos los rotores de alta velocidad se desgasta gradualmente, y si se utilizan en diferentes centrífugas, se lleva un cuaderno para cada una, en el que se anota el número de horas de funcionamiento a velocidad máxima o reducida. Si no se sigue esto, pueden producirse daños peligrosos y costosos. Para evitar la corrosión u otros defectos que podrían provocar grietas, los rotores deben inspeccionarse, limpiarse y secarse con frecuencia. Si el rotor se trata con una solución desinfectante, se lava con agua y se seca. Compruebe periódicamente el estado de los anillos de goma y las tapas de los vasos de centrífuga y lubríquelos según las recomendaciones del fabricante. Si los vasos están hechos de diferentes materiales (por ejemplo, celuloide, polipropileno, acero inoxidable), asegúrese de utilizar tapas diseñadas para los tipos adecuados. Las tapas suelen ser similares en apariencia, pero si se colocan sobre vasos que no combinan, estos últimos pueden gotear. Si las copas y los rotores se almacenan bien y se manipulan correctamente, esto no sucederá.

Mezcla y destrucción de microorganismos.

Cuando se utilizan mezcladores, mezcladores, desintegradores ultrasónicos, molinos coloidales, molinos de chorro, trituradoras y morteros para destruir bacterias, se deben observar las siguientes reglas.

Utilice una caja biológicamente segura.

Utilice equipo seguro que evite fugas de líquido del recipiente. Si no hay protección contra fugas, debe asegurarse de que no esté presente antes de comenzar a trabajar. Para ello, se realizan pruebas preliminares con agua esterilizada, solución salina o azul de metileno.

Durante el funcionamiento, cuelgue una toalla empapada en una solución desinfectante sobre la batidora. Inmediatamente después de su uso, se esterilizan la batidora y los residuos.

Evite el uso de recipientes de vidrio para mezclar materiales infecciosos.

A veces, para evitar la destrucción de las piezas de trabajo y reducir el calentamiento del contenido, es necesario enfriar el recipiente de la batidora. Después de detener el mezclador, no abrir el recipiente durante al menos 1 minuto, permitiendo que el aerosol se asiente.

Manejo de animales

Los animales son capaces de propagar patógenos a través de la saliva, la orina o los excrementos. A falta de información específica, todos los animales deben considerarse portadores de la infección. Para reducir la propagación de polvo y desechos en la jaula, se manipulan con mucho cuidado. Las jaulas usadas donde se guardaban los animales se esterilizan en autoclave junto con los desechos, recipientes y bebederos, o las propias jaulas se desinfectan con una solución de cloramina al 10%.

Al alimentar, dar de beber o sacar animales infectados de las jaulas, use guantes gruesos. No puedes mover objetos dentro de la jaula con las manos desnudas.

Al inyectar bacterias en animales, use guantes protectores. Los movimientos de los animales deben restringirse (por ejemplo, utilizando una jaula pequeña especial, un soporte, etc.) o sedarse para evitar la propagación de material biológico peligroso o la contaminación de otros animales y del personal.

Las puertas de las zonas con animales se mantienen cerradas en todo momento, excepto cuando sea necesario para entrar o salir. No se debe permitir la entrada a estas instalaciones a personas no autorizadas.

En cada habitación con animales debe haber un recipiente con una solución desinfectante, que debe renovarse diariamente. Está destinado a la desinfección de guantes y manos, así como a la desinfección general. Las manos, el suelo, las paredes y los comederos de las jaulas se lavan periódicamente con una solución desinfectante probada y de concentración adecuada.

Los canalones del suelo de las instalaciones para animales se llenan periódicamente con agua o una solución desinfectante para que los gases que se forman en los desagües no se eleven. El cabello afeitado y otros desechos no deben arrojarse a los desagües del piso, ya que los obstruirán.

Es necesario seguir las instrucciones para el control de insectos y roedores en cada habitación con animales y en los lugares donde se almacenan alimentos. Atención especial Asegúrese de que los animales vivos, especialmente los ratones, no puedan llegar a los desechos.

Las necropsias de los animales infectados se realizan en una caja segura. En este caso, se coloca una bata quirúrgica sobre la ropa de laboratorio y se colocan guantes de goma en las manos. Antes de abrir, el pelo de los animales se trata con una solución desinfectante adecuada.

Una vez completada la apertura, todo el material biopeligroso se coloca en contenedores adecuados y se esteriliza inmediatamente, y los instrumentos sucios se colocan en una bandeja y se llenan con una solución desinfectante. Se desinfecta la superficie interior de la caja de seguridad y las superficies contaminadas. Antes de quitarse los guantes de las manos, se limpian a fondo con un desinfectante, preparándolos así para la esterilización. Los animales muertos se colocan en contenedores especiales a prueba de fugas, se esterilizan en autoclave y se atan de forma segura antes de la cremación.

Aplicación de sistemas de vacío.

La filtración al vacío de suspensiones y la aspiración de medios de cultivo y sobrenadantes de vasos de centrífuga a matraces receptores son procedimientos de laboratorio comunes. Para evitar que se absorban aerosoles bacterianos o que se arroje líquido al sistema de vacío, se instala un filtro de aire en el camino hacia la fuente de vacío y se coloca un matraz de inyección de líquido entre el matraz receptor y el filtro de aire.

Varias manipulaciones

Los baños de agua y los baños con aparatos Warburg utilizados para la inactivación, incubación de bacterias o experimentos con ellas deben contener un desinfectante. Para baños de agua fría se recomienda utilizar propilenglicol al 70%. Advertencia. La azida sódica no debe utilizarse como desinfectante ya que es explosiva..

Los congeladores, los contenedores de nitrógeno líquido, los contenedores de hielo seco y los refrigeradores deben inspeccionarse, limpiarse y desinfectarse periódicamente. Al limpiarlos, utilice guantes de goma y respiradores protectores. Todos los materiales infecciosos almacenados en refrigeradores o congeladores están etiquetados.

Los cultivos líquidos peligrosos o los materiales infecciosos en polvo viables en recipientes de vidrio deben transportarse, incubarse y almacenarse en recipientes fáciles de manipular, irrompibles y a prueba de fugas, lo suficientemente grandes como para contener todo el líquido o el polvo en caso de fuga o rotura del recipiente. recipiente de vidrio.

Los medios inoculados en placas de Petri o medios sólidos en otros recipientes se transfieren e incuban en bandejas o recipientes herméticos.

Derrame de suspensiones bacterianas

Si se derrama una suspensión bacteriana dentro de una cabina de seguridad biológica, el peligro para el personal que se encuentra en la habitación es bajo. Sin embargo, para evitar la propagación de infecciones, se recomienda realizar inmediatamente una desinfección química, y esto se hace con el sistema de ventilación de la caja encendido. Las paredes, superficies de trabajo y equipos se rocían o limpian con un desinfectante. Una mezcla de desinfectante y detergente limpia las superficies tanto de suciedad como de bacterias. Una solución adecuada en este caso es una solución de yodóforo al 3% (por ejemplo, vescodina) o una dilución 1:100 de lejía doméstica (por ejemplo, Clorox) con la adición de un detergente no iónico al 0,7%. Todos los procedimientos se realizan con guantes. Para el tratamiento, utilice una cantidad suficiente de solución desinfectante para que llegue a las bandejas de drenaje y contenedores debajo de la superficie de trabajo. Levante la rejilla frontal y la bandeja y limpie todas las superficies. También se limpia el tanque de residuos y se vierte la solución desinfectante en un recipiente. La solución desinfectante, los guantes, el paño de limpieza y las esponjas se colocan en una bandeja y se esterilizan en autoclave. En este caso, sólo quedan sin desinfectar los filtros, el ventilador, los conductos de aire y otras partes internas de la caja.

Si es necesario desinfectar el interior de la caja, se realiza utilizando gas formaldehído. Pese 0,3 g de hojuelas de paraformaldehído por 0,03 m 3 de espacio de la caja y colóquelo dentro de la caja en una estufa eléctrica de modo que salga el cable de alimentación de la estufa. La humedad dentro de la caja se eleva a aproximadamente el 70% mediante la evaporación del agua en la placa calefactora. La temperatura de calentamiento de la loseta de paraformaldehído se mantiene a 292°C. La ventana de la caja se cubre con una lámina de plástico y se fija con cinta adhesiva. Si el aire de la caja entra en la habitación, conecte una manguera flexible al orificio de escape de la caja y condúzcala hasta la rejilla de ventilación de la habitación. Cuando un edificio utiliza un sistema de recirculación de aire, la manguera se conecta a una ventana o puerta abierta. Si el aire de la caja ingresa directamente al sistema de escape del edificio, entonces la compuerta de tiro está cerrada. Para despolimerizar el paraformaldehído, encienda la baldosa. Después de que se haya despolimerizado la mitad del paraformaldehído, encienda el ventilador de caja durante aproximadamente 3 s para que el formaldehído se extienda por todo el volumen. Después de la despolimerización completa, vuelva a encender el ventilador durante 3 s. Luego deje la caja durante al menos 1 hora. Después de esto, abra la válvula de tiro de la caja, asegurando que el aire fluya hacia la manguera flexible, corte la película plástica que cubre la ventana y encienda el ventilador de la caja. La caja se ventila durante varias horas para eliminar todos los restos de formaldehído.

Derramar material biológico potencialmente peligroso en un laboratorio fuera de un gabinete de bioseguridad puede poner en riesgo a quienes se encuentran allí. Si esto sucede, en primer lugar se debe evitar inhalar cualquier material que se encuentre en el aire, conteniendo la respiración y saliendo del laboratorio. Los que estaban en la habitación avisan a los demás del peligro y se dirigen a la ducha o al vestuario. Cuando se sabe o se sospecha que la ropa está contaminada, se quita con cuidado, se dobla con las áreas contaminadas hacia adentro y luego se coloca en una bolsa o se carga directamente en el autoclave. Lavar las zonas supuestamente contaminadas, así como las manos y la cara. No vuelva a ingresar al laboratorio durante 30 minutos para permitir que se asienten las gotas de aerosol formadas durante el derrame. Antes de ingresar al laboratorio para limpiar el área donde se ha derramado la suspensión, use ropa protectora (guantes de goma, zapatos aptos para autoclave, capa y respirador). Si la suspensión se ha derramado al suelo, no se recomienda utilizar bata quirúrgica, que puede entrar en contacto con el suelo al agacharse. Coloque un contenedor de desechos cerca del lugar donde se derramó la suspensión, transfiera allí trozos grandes de material contaminado y cúbralo con una tapa. El área donde el material derramado es visible y sus alrededores se riegan cuidadosamente con una solución de hipoclorito que contenga 1000 ppm de cloro disponible, una solución de yodóforo que contenga 1600 ppm de yodo u otro desinfectante adecuado. El tratamiento se realiza durante 15 minutos evitando salpicaduras. Luego limpie la solución desinfectante y el material derramado hacia el centro con una toalla de papel o tela. Las toallas sucias se tiran inmediatamente al contenedor de residuos. El contenedor de desechos, especialmente el fondo, se limpia desde el exterior con una toalla empapada en una solución desinfectante y éste y otros materiales se colocan en un autoclave para su esterilización. Quitar los zapatos, la capa exterior, el respirador y los guantes y esterilizarlos en autoclave. Lávate las manos y la cara y, si es posible, báñate.

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