ที่สาม วิธีการวินิจฉัยทางห้องปฏิบัติการของการติดเชื้อพยาธิ การตรวจอุจจาระ

7.7. วิธีการตรวจสอบความมีชีวิตของไข่พยาธิและตัวอ่อนของพยาธิ

ความมีชีวิตของไข่พยาธินั้นพิจารณาจาก รูปร่างโดยการย้อมด้วยสีสำคัญปลูกใน เงื่อนไขที่เหมาะสมที่สุดและการเก็บตัวอย่างทางชีวภาพ

7.7.1. การพิจารณาความมีชีวิตของไข่พยาธิหรือตัวอ่อนโดยลักษณะที่ปรากฏ

ไข่พยาธิจะถูกส่องด้วยกล้องจุลทรรศน์ในระดับต่ำก่อน จากนั้นจึงใช้กำลังขยายสูง ในไข่พยาธิที่มีรูปร่างผิดปกติและตายแล้ว เปลือกจะฉีกขาดหรือโค้งงอเข้าด้านใน พลาสมาจะมีเมฆมากและคลายออก ในไข่ที่แบ่งส่วน ลูกบด (บลาสโตเมียร์) มีขนาดไม่เท่ากัน มีรูปร่างไม่สม่ำเสมอ และมักจะเลื่อนไปอยู่ที่ขั้วเดียว บางครั้งมีไข่ที่ผิดปกติซึ่งแม้จะมีรูปร่างผิดปกติจากภายนอก แต่ก็ยังพัฒนาได้ตามปกติ ในตัวอ่อนของพยาธิตัวกลมที่มีชีวิต จะมีรายละเอียดเล็กๆ น้อยๆ อยู่ตรงกลางลำตัวเท่านั้น เมื่อพวกมันตาย มันจะแพร่กระจายไปทั่วร่างกาย และจะมีแวคิวโอลใสขนาดใหญ่ที่เรียกว่า “สายไข่มุก” ปรากฏขึ้น

เพื่อตรวจสอบความมีชีวิตของไข่ที่โตเต็มที่ของพยาธิตัวกลม, พยาธิแส้ม้า, พยาธิเข็มหมุด, การเคลื่อนไหวที่ใช้งานอยู่ของตัวอ่อนควรเกิดจากการให้ความร้อนเล็กน้อยกับยา (จนถึงอุณหภูมิไม่เกิน 37 ° C) จะสะดวกกว่าในการสังเกตความมีชีวิตของพยาธิตัวกลมและตัวอ่อนพยาธิแส้ม้าหลังจากแยกออกจากเปลือกไข่โดยการกดบนกระจกฝาครอบของการเตรียมด้วยเข็มผ่าหรือแหนบ

ในตัวอ่อนของพยาธิตัวกลมที่รุกราน มักจะเห็นฝักลอกออกที่ปลายส่วนหัว และในตัวอ่อนของพยาธิแส้ม้าที่พัฒนาเสร็จแล้วในไข่ จะพบสไตเล็ตในบริเวณนี้ที่กำลังขยายสูง ในตัวอ่อนพยาธิที่ตายแล้วโดยไม่คำนึงถึงตำแหน่ง (ในหรือนอกไข่) จะสังเกตเห็นการสลายตัวของร่างกาย ในกรณีนี้ โครงสร้างภายในของตัวอ่อนจะมีลักษณะเป็นบล็อกหรือเป็นเม็ด และร่างกายจะมีสีขุ่นและทึบแสง พบแวคิวโอลในร่างกาย และพบรอยแตกบนหนังกำพร้า

ความอยู่รอดของชั้นบรรยากาศ taeniid (วัว พยาธิตัวตืดหมู ฯลฯ) จะพิจารณาจากการเคลื่อนไหวของตัวอ่อนเมื่อสัมผัสกับพวกมัน เอนไซม์ย่อยอาหาร- ไข่จะถูกวางบนกระจกนาฬิกาด้วย น้ำย่อยสุนัขหรือน้ำลำไส้เล็กส่วนต้นเทียม องค์ประกอบหลัง: ตับอ่อน - 0.5 กรัม, โซเดียมไบคาร์บอเนต - 0.09 กรัม, น้ำกลั่น - 5 มล. วางแว่นตาที่มีไข่ไว้ในเทอร์โมสตัทที่อุณหภูมิ 36 - 38 ° C เป็นเวลา 4 ชั่วโมง ในกรณีนี้ เอ็มบริโอที่มีชีวิตจะถูกปล่อยออกจากเยื่อหุ้มของพวกมัน เปลือกของสิ่งมีชีวิตในชั้นบรรยากาศยังละลายในเปปซินที่เป็นกรดและในสารละลายทริปซินที่เป็นด่างหลังจากผ่านไป 6-8 ชั่วโมงในเทอร์โมสตัทที่อุณหภูมิ 38 ° C

หากคุณวางไข่ teniid ในสารละลายโซเดียมซัลไฟด์ 1% หรือสารละลายโซเดียมไฮโปคลอไรด์ 20% หรือในสารละลายคลอรีน 1% ที่อุณหภูมิ 36 - 38 ° C ตัวอ่อนที่โตเต็มที่และมีชีวิตจะถูกปล่อยออกจากเยื่อหุ้มเซลล์ และไม่ เปลี่ยนแปลงภายใน 1 วัน ออนโคสเฟียร์ที่ยังไม่สมบูรณ์และตายจะหดตัวหรือบวมและขยายใหญ่ขึ้นอย่างรวดเร็ว จากนั้นจะ "ละลาย" ภายใน 10 นาทีถึง 2 ชั่วโมง ตัวอ่อนเทนีดที่มีชีวิตยังเคลื่อนไหวอย่างแข็งขันในส่วนผสมของสารละลายโซเดียมคลอไรด์ 1% สารละลายโซเดียมไบคาร์บอเนต 0.5% และน้ำดีที่อุณหภูมิ 36 - 38 °C

ความมีชีวิตของ Adolescaria fascioli ที่สะสมบนพืชและวัตถุอื่น ๆ ในแหล่งน้ำได้รับการตรวจสอบโดยการตรวจสอบพวกมันบนแผ่นกระจกในสารละลายทางสรีรวิทยาภายใต้กล้องจุลทรรศน์ที่มีขั้นตอนการให้ความร้อน เมื่อตัวอ่อนของตัวสั่นได้รับความร้อน พวกมันก็เริ่มเคลื่อนไหว

เพื่อตรวจสอบความมีชีวิตของไข่พยาธิตัวตืดแคระ วิธีที่ง่ายที่สุดคือโดย N.S. Ionina: ในไข่ที่มีชีวิต ค่ามัธยฐานของตะขอของตัวอ่อนจะขนานกับตะขอด้านข้าง หรืออย่างหลังจะทำมุมโดยมีค่ามัธยฐานอยู่ที่ฐานน้อยกว่า 45° ในไข่ที่ตายแล้ว คู่ด้านข้างจะสร้างมุมโดยให้คู่มัธยฐานอยู่ที่ฐานมากกว่า 45° หรือตะขอจะกระจัดกระจายแบบสุ่ม (การจัดเรียงคู่ของไข่จะหายไป) บางครั้งเอ็มบริโอจะหดตัวและเกิดเป็นเม็ดเล็กๆ วิธีการที่แม่นยำยิ่งขึ้นนั้นขึ้นอยู่กับลักษณะของการเคลื่อนไหวของชั้นบรรยากาศในระหว่างการเปลี่ยนแปลงอุณหภูมิอย่างรวดเร็ว: จาก 5 - 10 °ถึง 38 - 40 ° C

ควรศึกษาความมีชีวิตของไข่ไส้เดือนฝอยที่ยังไม่เจริญเต็มที่ในห้องชื้น (จานเพาะเชื้อ) โดยวางไข่พยาธิตัวกลมในสารละลายฟอร์มาลดีไฮด์ 3% ที่เตรียมในสารละลายไอโซโทนิกโซเดียมคลอไรด์ที่อุณหภูมิ 24 - 30 ° C ไข่พยาธิแส้ม้าใน สารละลายกรดไฮโดรคลอริก 3% ที่อุณหภูมิ 30 - 35 ° C; ไข่พยาธิเข็มหมุดในสารละลายไอโซโทนิกโซเดียมคลอไรด์ที่อุณหภูมิ 37 °C ควรเปิดจานเพาะเชื้อสัปดาห์ละ 1-2 ครั้งเพื่อการเติมอากาศที่ดีขึ้น และควรนำกระดาษกรองไปชุบน้ำสะอาดอีกครั้ง

การสังเกตการพัฒนาของไข่พยาธิจะดำเนินการอย่างน้อย 2 ครั้งต่อสัปดาห์ การไม่มีสัญญาณของการพัฒนาภายใน 2 - 3 เดือนบ่งชี้ว่าไม่สามารถมีชีวิตได้ สัญญาณของการพัฒนาไข่พยาธิเป็นขั้นตอนแรกของการบดโดยแบ่งเนื้อหาของไข่ออกเป็นบลาสโตเมียร์แยกจากกัน ในช่วงวันแรกจะมีการพัฒนาบลาสโตเมอร์มากถึง 16 ตัวซึ่งผ่านเข้าสู่ระยะที่สอง - โมรูลา ฯลฯ

เพาะเลี้ยงไข่พยาธิปากขอในกระบอกแก้ว (สูง 50 ซม. และเส้นผ่านศูนย์กลาง 7 ซม.) ปิดด้วยจุก ส่วนผสมของทรายฆ่าเชื้อ ถ่าน และอุจจาระในปริมาณเท่ากันกับไข่พยาธิปากขอ เจือจางด้วยน้ำจนมีความคงตัวกึ่งของเหลว เทลงที่ด้านล่างของกระบอกสูบอย่างระมัดระวังโดยใช้หลอดแก้ว ในช่วง 1 - 2 วันของการปักหลักในความมืดที่อุณหภูมิ 25 - 30 ° C ตัวอ่อนของ rhabditiform จะฟักออกจากไข่และหลังจาก 5 - 7 วันพวกมันจะกลายเป็นฟิลาริฟอร์ม: ตัวอ่อนจะคลานขึ้นไปตามผนังของทรงกระบอกซึ่งพวกมันอยู่ มองเห็นได้ด้วยตาเปล่า

ไข่ของตัวสั่นที่พัฒนาตามธรรมชาติในน้ำ เช่น opisthorchis, diphyllobothriidae, fasciolae และอื่นๆ จะถูกวางบนกระจกนาฬิกา จานเพาะเชื้อ หรือภาชนะอื่นๆ และเทน้ำธรรมดาลงไปเป็นชั้นเล็กๆ เมื่อปลูกไข่ Fasciola ควรคำนึงว่าพวกมันจะพัฒนาเร็วขึ้นในความมืดในขณะที่ไข่ที่มีชีวิตที่อุณหภูมิ 22 - 24 ° C จะเกิดปาฏิหาริย์ใน 9 - 12 วัน เมื่อกล้องจุลทรรศน์กำลังพัฒนาไข่ตัวสั่น การเคลื่อนไหวของมิราซิเดียมจะมองเห็นได้ชัดเจน Miracidium fasciola โผล่ออกมาจากเปลือกไข่เมื่อมีแสงเท่านั้น

วิธีฟูลบอร์น พยาธิปากขอและตัวอ่อนสตรองจิลิดเพาะเลี้ยงบนวุ้นในจานเพาะเชื้อโดยใช้ถ่านจากสัตว์ หลังจากเก็บไว้ในเทอร์โมสตัทที่อุณหภูมิ 25 - 30 ° C เป็นเวลา 5 - 6 ชั่วโมง ตัวอ่อนจะคลานไปทั่ววุ้นโดยทิ้งเส้นทางของแบคทีเรียไว้เบื้องหลัง

วิธีฮาราดะและโมริ เติมน้ำกลั่น 7 มล. ลงในหลอดทดลองที่วางอยู่บนชั้นวาง ใช้แท่งไม้ตักอุจจาระ 0.5 กรัมแล้วทาบนกระดาษกรอง (15 x 150 มม.) ห่างจากขอบด้านซ้าย 5 ซม. (การดำเนินการนี้ดำเนินการบนแผ่นกระดาษเพื่อปกป้องพื้นผิวของม้านั่งในห้องปฏิบัติการ) จากนั้นสอดแถบที่มีสเมียร์เข้าไปในหลอดทดลอง โดยให้ปลายด้านซ้ายที่ไม่มีสเมียร์ไปถึงด้านล่างของหลอดทดลอง ปิดปลายด้านบนด้วยกระดาษแก้วแล้วพันให้แน่นด้วยแถบยางยืด หมายเลขและนามสกุลของผู้ถูกตรวจเขียนอยู่บนหลอดทดลอง ในสถานะนี้ หลอดจะถูกเก็บไว้เป็นเวลา 8 - 10 วันที่อุณหภูมิ 28 °C หากต้องการศึกษาตัวอ่อน ให้ถอดฝาครอบกระดาษแก้วออกและดึงแถบกระดาษกรองออกด้วยแหนบ ควรใช้ความระมัดระวังเมื่อทำเช่นนี้ เนื่องจากตัวอ่อนติดเชื้อจำนวนเล็กน้อยอาจเคลื่อนไปที่ด้านบนของกระดาษกรองหรือด้านข้างของท่อ และเจาะเข้าไปใต้พื้นผิวของกระดาษแก้ว

วางหลอดไว้ในอ่างน้ำร้อนที่อุณหภูมิ 50 °C เป็นเวลา 15 นาที หลังจากนั้นจึงเขย่าสิ่งที่อยู่ภายในและเทลงในหลอดขนาด 15 มล. อย่างรวดเร็วเพื่อตกตะกอนตัวอ่อน หลังจากการปั่นแยก ส่วนลอยเหนือตะกอนจะถูกเอาออก และตะกอนจะถูกถ่ายโอนไปยังสไลด์แก้วที่ปิดด้วยแผ่นปิด และตรวจสอบด้วยกล้องจุลทรรศน์ภายใต้กำลังขยายต่ำ

สำหรับ การวินิจฉัยแยกโรคตัวอ่อน filariform คุณต้องใช้ข้อมูลในตารางที่ 3

ตารางที่ 3

การวินิจฉัยแยกโรคของตัวอ่อน FILARIOID ของ A. DUODENALE, N. AMERICANUS, S. STERCORALIS, TRICHOSTRONGYLUS SP.

ตัวอ่อน	ขนาด	สัญญาณลักษณะ
ก. ลำไส้เล็กส่วนต้น	ความยาวลำตัวประมาณ 660 µm ความยาวฝัก - 720 nm	แถบของหมวกเด่นชัดน้อยกว่า, ส่วนที่ยื่นออกมาในช่องปากจะสังเกตเห็นได้น้อยกว่า, ส่วนหน้าของร่างกาย (แต่ไม่ใช่หมวก) ทื่อ, เส้นผ่านศูนย์กลางของท่อลำไส้เล็กกว่าหลอดอาหาร, ปลายหางทื่อ
เอ็น. อเมริกานัส	ความยาวลำตัวประมาณ 590 ไมครอน ความยาวฝัก - 660 นาโนเมตร	หมวกมีลายเส้นอย่างเห็นได้ชัดโดยเฉพาะในส่วนหางของร่างกาย ส่วนที่ยื่นออกมาของช่องปากปรากฏสีเข้ม ส่วนปลายด้านหน้าของร่างกาย (แต่ไม่ใช่หมวก) มีลักษณะโค้งมนเหมือนปลายแคบ ไข่ไก่ส่วนหน้าของท่อลำไส้มีเส้นผ่านศูนย์กลางเท่ากับหลอดอาหารส่วนปลายหางจะแหลมแหลม
เอส. สเตอร์โคราลิส	ความยาวลำตัวประมาณ 500 ไมครอน	ตัวอ่อนไม่มีฝัก หลอดอาหารยาวประมาณครึ่งหนึ่งของลำตัว หางทู่หรือแตกแขนง
ไตรโคสตรองทิลัส เอสพี	ความยาวลำตัวประมาณ 750 ไมครอน	ลำไส้ไม่ตรง แต่ซิกแซก ปลายหางมน มีรูปร่างคล้ายกระดุม

7.7.2. วิธีการย้อมสีไข่พยาธิและตัวอ่อน

เนื้อเยื่อที่ตายแล้วโดยส่วนใหญ่แล้วจะรับรู้สีได้เร็วกว่าเนื้อเยื่อที่มีชีวิต คุณสมบัติเหล่านี้ใช้ในพยาธิวิทยาเพื่อตรวจสอบความมีชีวิตของไข่และตัวอ่อนของพยาธิ อย่างไรก็ตาม ในบางกรณี สีบางชนิดจะรับรู้ได้จากเนื้อเยื่อที่มีชีวิตได้ดีกว่าสีที่ตายแล้ว

เพื่อแยกความแตกต่างระหว่างไข่และตัวอ่อนที่มีชีวิตและที่ตายแล้ว ให้ใช้สีและวิธีการต่อไปนี้

Leukobase methylene blue มักใช้ในการย้อมเนื้อเยื่อที่มีชีวิตและเนื้อเยื่อที่ตายแล้ว เซลล์หรือเนื้อเยื่อที่มีชีวิตจะลดเมทิลีนบลูให้เป็นลิวโคเบสที่ไม่มีสี ดังนั้น จึงได้สีมา

เกณฑ์สำหรับสภาพของไข่คือสีของตัวอ่อน แต่ไม่ใช่สีของเปลือก ความสามารถนี้สัมพันธ์กับสภาวะที่ไข่ตาย ในกรณีที่เยื่อเส้นใยในไข่ตายไม่สูญเสียคุณสมบัติกึ่งซึมผ่านได้ จะไม่ยอมให้สีย้อมซึมผ่าน ดังนั้นตัวอ่อนที่ตายแล้วจะไม่เกิดคราบ เอ็มบริโอที่มีสีบ่งบอกถึงการตายของไข่เสมอ

ในการระบายสีไข่พยาธิตัวกลม คุณสามารถใช้เมทิลีนบลูในสารละลายกรดแลกติกกับด่างกัดกร่อน (เมทิลีนบลู 0.05 กรัม, โซเดียมไฮดรอกไซด์ 0.5 กรัม, กรดแลคติก 15 มล.) ไข่ที่มีชีวิตไม่รับรู้สี ตัวอ่อนของไข่ที่ตายแล้วจะเปลี่ยนเป็นสีน้ำเงิน การย้อมสีตัวอ่อนของพยาธิตัวกลมด้วยสารละลายพื้นฐานของสีฟ้าสดใสเครซิลที่ความเข้มข้น 1:10,000 ดำเนินการดังนี้: หยดของเหลวที่มีไข่พยาธิตัวกลมและหยดสารละลายสีพื้นฐานหนึ่งหยดลงบนสไลด์แก้ว การเตรียมการถูกคลุมด้วยแผ่นปิดซึ่งกดให้แน่นกับสไลด์ขณะแตะเบา ๆ ด้วยเข็มผ่า จำนวนตัวอ่อนที่เกิดขึ้นใหม่และระดับของการย้อมสีจะสังเกตได้ภายใต้กล้องจุลทรรศน์ หลังจากนั้นให้ตรวจสอบยาตัวเดียวกันอีกครั้งหลังจากผ่านไป 2 - 3 ชั่วโมง เฉพาะตัวอ่อนที่ไม่มีรูปร่างซึ่งไม่ได้เปื้อนเป็นเวลา 2 ชั่วโมงเท่านั้นที่จะถือว่ายังมีชีวิตอยู่ ตัวอ่อนที่ตายแล้วจะไม่โผล่ออกมาจากไข่หรือกลายเป็นสีเมื่อเปลือกแตก (บางส่วนหรือทั้งหมด)

เมื่อพิจารณาความมีชีวิตของไข่พยาธิตัวกลมในนกสามารถย้อมการเตรียมได้ 5% สารละลายแอลกอฮอล์โยดา. เมื่อนำไปใช้กับการเตรียมเชื้อโรคของไข่ Ascaridia ที่ตายแล้วจะเกิดขึ้นภายใน 1 - 3 วินาที ทาสีส้ม

ไข่ opisthorchis ที่ตายแล้วและชั้นบรรยากาศของพยาธิตัวตืดของวัวถูกย้อมด้วยสารละลายโทลูอิดีนบลู (1:1000) และบนโคสเฟียร์ของพยาธิตัวตืดของวัวที่ตายแล้วด้วยสารละลายของสีฟ้าสดใส (1:10000) ในเวลาเดียวกัน เอ็มบริโอและเปลือกของทั้งไข่ที่ตายแล้วและไข่ที่มีชีวิตจะได้รับสี ดังนั้นหลังจากการย้อมสี ไข่และออนโคสเฟียร์จะถูกล้างเข้าไป น้ำสะอาดและย้อมด้วยซาฟรานินเพิ่มเติม (เจือจาง 1:10000 ในแอลกอฮอล์ 10 °C) แอลกอฮอล์จะขจัดสีออกจากเปลือกหอย และซาฟรานินจะเปลี่ยนเป็นสีแดง เป็นผลให้ไข่ที่มีชีวิตเปลี่ยนเป็นสีแดง ไข่ที่มีตัวอ่อนที่ตายแล้วจะเปลี่ยนเป็นสีน้ำเงิน แต่เปลือกยังคงเป็นสีแดง ตัวอ่อนที่ตายแล้วของพยาธิตัวตืดวัวบนชั้นบรรยากาศอย่างรวดเร็วภายในไม่กี่นาทีจะถูกย้อมเป็นสีแดงสดหรือสีชมพูด้วยซาฟรานินหรือสีน้ำเงินพร้อมกับสีฟ้าเครซิลสดใสที่เจือจาง 1:4000 หรือด้วยสีแดงครามครามที่เจือจางที่ 1:1000 - 1:2000 . เอ็มบริโอที่มีชีวิตจะไม่เปลี่ยนแปลงภายใต้อิทธิพลของสีเหล่านี้แม้จะผ่านไป 2 - 7 ชั่วโมงก็ตาม

เพื่อตรวจสอบความมีชีวิตของไข่พยาธิตัวตืดแคระขอแนะนำให้ใช้สีต่อไปนี้:

1. Brilliantcreazyl blue (1:8000) - หลังจากผ่านไป 1 ชั่วโมง ชั้นบรรยากาศของไข่ที่ตายแล้วจะมีสีสันสดใสเป็นพิเศษ ซึ่งโดดเด่นอย่างเห็นได้ชัดเมื่อเทียบกับพื้นหลังสีซีดหรือไม่มีสีของส่วนที่เหลือของไข่

2. ซาฟรานิน (1:8000 เมื่อสัมผัสเป็นเวลา 2 ชั่วโมง และ 1:5000 เมื่อสัมผัสเป็นเวลา 3 - 5 ชั่วโมง)

3. สารละลายกรดไพโรกัลลิก 50% ในการเจือจาง 1:2 - เมื่อสัมผัสเป็นเวลา 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 29 - 30 ° C (ยิ่งอุณหภูมิต่ำลง กระบวนการย้อมก็จะนานขึ้น)

7.7.3. วิธีการเรืองแสงเพื่อศึกษาไข่พยาธิและตัวอ่อนของพยาธิ

กล้องจุลทรรศน์ฟลูออเรสเซนต์ทำให้สามารถแยกความแตกต่างระหว่างสิ่งมีชีวิตและวัตถุที่ตายแล้วได้โดยไม่ทำลายไข่ สำหรับการเรืองแสงนั้น ไม่ใช่รังสีอัลตราไวโอเลตที่ใช้ แต่เป็นส่วนสีน้ำเงินม่วงของแสงที่มองเห็นได้ โดยใช้กล้องจุลทรรศน์ธรรมดาและกระจกสไลด์ มีการเพิ่มชุดฟิลเตอร์สีพิเศษให้กับไฟเรืองแสง OI-18

ไข่ที่มีชีวิตและไข่ตายของพยาธิตัวกลม พยาธิเข็มหมุด พยาธิตัวตืดแคระ พยาธิตัวตืดวัว พยาธิตัวตืดชนิดกว้าง และพยาธิอื่นๆ จะเรืองแสงแตกต่างกัน ปรากฏการณ์นี้สังเกตได้ทั้งในระหว่างการเรืองแสงปฐมภูมิโดยไม่ใช้สีย้อมและเมื่อย้อมด้วยฟลูออโรโครม (ส้มอะคริดีน, คอรีฟอสฟีน, พรีมูลิน, ออโรไลน์, เบอร์เลรินซัลเฟต, ทริปปาฟลาวิน, ริวานอล, ควินิน ฯลฯ )

ไข่พยาธิตัวกลมที่ไม่มีสี มีชีวิต และไม่มีการแบ่งส่วน จะเรืองแสงเป็นสีเขียวสดใสและมีสีเหลือง ในไข่ที่ตายแล้ว เปลือกจะปล่อยแสงสีเขียวสว่างกว่าส่วนของตัวอ่อนสีเขียวเข้มมาก ในไข่พยาธิตัวกลมที่มีตัวอ่อนจะมีเพียงเปลือกเท่านั้นที่ปรากฏ และในไข่ที่ตายแล้วทั้งเปลือกและตัวอ่อนจะมีสีเหลืองสดใส

ไข่ที่มีชีวิตของพยาธิเข็มหมุดและพยาธิตัวตืดแคระที่ไม่มีสีและไม่มีการแบ่งส่วนจะปล่อยแสงสีเหลืองแกมเขียว เปลือกไข่ที่ตายแล้วจะเรืองแสงอย่างเข้มข้นกับพื้นหลังของมวลตัวอ่อนสีเขียวเข้ม

ด้วยการเรืองแสงทุติยภูมิ (เมื่อย้อมด้วยสีส้มอะคริดีนด้วยการเจือจาง 1:10,000 และ 1:50,000 จาก 30 นาทีถึง 2 ชั่วโมง) เปลือกของไส้เดือนฝอยที่มีชีวิตและที่ตายแล้ว ตัวสั่น และซีสโตดจะเรืองแสงแตกต่างกัน

เปลือกของไข่ที่มีชีวิตและตายแล้วของพยาธิตัวกลม ทอกโซการา พยาธิเข็มหมุด พยาธิตัวตืดแคระ พยาธิตืดหนู พยาธิตัวตืดวัว และพยาธิตัวตืดจะมีสีส้มแดง เอ็มบริโอของไข่ที่มีชีวิตของพยาธิตัวกลม ทอกซาคาริส พยาธิตัวตืดของหนู พยาธิตัวตืดในวงกว้าง และในบรรยากาศของพยาธิตัวตืดวัว จะเรืองแสงเป็นสีเขียวเข้มหรือเขียวเทา ไข่ตัวอ่อนที่ตายแล้วของหนอนพยาธิเหล่านี้จะมีสีส้มแดง "ไหม้" พยาธิเข็มหมุดและตัวอ่อนทอกโซคาราที่มีชีวิต (เปลือกไข่หลุดออกมา) จะปล่อยแสงสีเทาอมเขียว เมื่อพวกมันตาย สีจะเปลี่ยนจากส่วนหัวเป็นสีเขียวอ่อน "ไหม้" จากนั้นจึงเปลี่ยนเป็นสีเหลือง สีส้ม และสีส้มสดใสในที่สุด

เมื่อย้อมด้วยฟลูออโรโครม คอรีฟอสไฟลัม พรีมูลิน ไข่ที่ตายแล้วของพยาธิตัวกลม และพยาธิแส้ม้า จะแสดงแสงจากสีเหลืองไลแลคไปจนถึงสีแดงทองแดง ไข่ที่มีชีวิตจะไม่เรืองแสง แต่จะทาสีเขียวเข้ม

ไข่ที่มีชีวิตของตัวสั่น (พาราโกนิมัสและโคลนอร์ชิส) จะไม่เรืองแสงเมื่อย้อมด้วยสีส้มอะคริดีน แต่ไข่ที่ตายแล้วจะมีสีเขียวอมเหลือง

นอกจากนี้ยังสามารถใช้วิธีการเรืองแสงเพื่อกำหนดความมีชีวิตของตัวอ่อนของหนอนพยาธิได้ ดังนั้นฟลูออโรโครมตัวอ่อน Strongylate และ rhabditatus ด้วยสารละลายของสีส้มอะคริดีน (1:2000): ตัวที่มีชีวิต - สีเขียว (มีสีอ่อน) ตัวที่ตายแล้ว - ด้วยแสงสีส้มสดใส

มิราซิเดียที่มีชีวิตซึ่งโผล่ออกมาจากเปลือกจะปล่อยแสงสีน้ำเงินสลัวพร้อมกับกลีบดอกสีเหลืองอ่อนที่แทบจะมองไม่เห็น แต่หลังจากผ่านไป 10 - 15 นาทีพวกมันก็ปรากฏขึ้นพร้อมกับแสงสีเขียวอ่อนที่ "ลุกไหม้" จากนั้นตามด้วยแสงสีส้มแดง

7.7.4. วิธีตัวอย่างทางชีวภาพ

ตัวอย่างเช่น เพื่อตรวจสอบความมีชีวิตของไข่พยาธิตัวกลม (พยาธิตัวกลม คน ท็อกโซการา ท็อกซัสคาริส ฯลฯ) ต่อสัตว์ (หนูตะเภา หนูเมาส์) จำเป็นต้องมีไข่ที่มีตัวอ่อนที่พัฒนาแล้วอย่างน้อย 100 - 300 ฟอง ไข่ Ascaris ในสารละลายโซเดียมคลอไรด์ไอโซโทนิกจะถูกปิเปตผ่านปากของหนูหรือหนูตะเภา หลังจากผ่านไป 6 - 7 วัน สัตว์จะถูกฆ่า ตับและปอดจะถูกเปิดออก และตรวจสอบแยกกันว่ามีตัวอ่อนพยาธิอยู่หรือไม่ เมื่อต้องการทำเช่นนี้ ตับและปอดจะถูกสับเป็นชิ้นเล็ก ๆ ด้วยกรรไกร และตรวจสอบโดยใช้วิธี Berman หรือ Supryaga (ข้อ 6.1.2)

หากสัตว์ติดเชื้อไข่ที่มีชีวิตรุกราน การชันสูตรพลิกศพจะพบตัวอ่อนพยาธิที่อพยพย้ายถิ่นในตับและปอด

ในกรณีของการติดเชื้อ ไข่ Fasciola ในอุจจาระของสัตว์ทดลองสามารถตรวจพบได้ในกระต่ายหลังจากผ่านไป 2 เดือน หนูตะเภา- หลังจาก 50 วัน ในหนูเมาส์ - หลังจาก 35 - 40 วัน

เพื่อให้ได้รับคำตอบเร็วขึ้น สัตว์ทดลองจะถูกเปิดออกหลังจากผ่านไป 20 - 30 วัน และตรวจตับว่ามีพังผืดอายุน้อยหรือไม่

เพื่อตรวจสอบความอยู่รอดของไข่พยาธิตัวตืดแคระ แนะนำให้ให้อาหารพวกมันกับหนูขาวที่ไม่ติดเชื้อก่อนหน้านี้ ตามด้วยการเปิดไข่สัตว์หลังจาก 92-96 ชั่วโมง และระบุซิสติเซอร์คอยด์ในวิลลี่ในลำไส้หรือซีสโตดในลำไส้เล็ก

เพื่อตรวจสอบความมีชีวิตของไข่ opisthorchis ขอแนะนำวิธีการ (German S.M., Baer S.A., 1984) โดยอาศัยการกระตุ้นทางเคมีกายภาพของต่อมฟักไข่ miracidium และการกระตุ้นการเคลื่อนไหวของตัวอ่อนซึ่งนำไปสู่การเปิดไข่ cap และการปลดปล่อยมิราซิเดียมอย่างแข็งขันในสภาวะการทดลอง

การแขวนไข่ opisthorchis ในน้ำจะถูกทำให้เย็นลงล่วงหน้าที่ 10 - 12 °C (การทำงานในภายหลังทั้งหมดจะดำเนินการที่อุณหภูมิห้อง 19 - 20 °C) เติมสารแขวนลอย 1 หยดที่มีไข่ 100 - 150 ฟองลงในหลอดหมุนเหวี่ยง วางหลอดทดลองไว้บนขาตั้งเป็นเวลา 5 - 10 นาที ในช่วงเวลานี้ ไข่ทั้งหมดจะจมลงสู่ก้นบ่อ จากนั้นน้ำส่วนเกินจะถูกดูดออกอย่างระมัดระวังด้วยแถบกระดาษกรองและเติมสื่อพิเศษ 2 หยดลงในหลอดทดลอง สื่อถูกเตรียมในบัฟเฟอร์ Tris-HCl 0.005 M สารละลายเอธานอล 12 - 13% และสีย้อม (ฟูกซิน, ซาฟรานิน, อีโอซิน, เมทิลีนบลู ฯลฯ ) จะถูกเติมลงในบัฟเฟอร์ เขย่าหลอดทดลอง ปิเปตที่บรรจุอยู่ในสไลด์แก้วแล้วปล่อยทิ้งไว้ 10 นาที โดยเขย่าเล็กน้อย จากนั้นเติมสื่อที่ระบุ 2 หยด การเตรียมการพร้อมสำหรับการใช้กล้องจุลทรรศน์ภายใต้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงทั่วไปที่กำลังขยาย 20 เท่า

ในช่วงเวลานี้ ฝาของตัวอ่อนที่มีชีวิตจะเปิดขึ้น และมิราซิเดียมจะออกสู่สภาพแวดล้อมที่กำหนดอย่างแข็งขัน เนื่องจากมีเอธานอลอยู่ พวกมันจึงถูกตรึงหลังจากผ่านไป 2 - 5 นาที แล้วจึงทาสีด้วยสีย้อม สามารถตรวจจับและนับได้อย่างง่ายดายด้วยกล้องจุลทรรศน์

ระดับความรู้และทักษะเบื้องต้น

นักเรียนจะต้องรู้:

1. ตัวแทนของ trematodes opisthorchis, paragonima, fasciola, dicrocoelium

2. วงจรชีวิต, เส้นทางการติดเชื้อของตัวสั่น, ภาพทางคลินิกโรคอายุการเก็บรักษาอุจจาระ

นักเรียนจะต้องสามารถ:

1. ระบุไข่ตัวสั่นโดยใช้รูปภาพและตาราง

2. สร้างมาตรการป้องกัน

3.เตรียมเนทีฟสเมียร์,สเมียร์ขนาดใหญ่,สเมียร์คาโต้,ประเมินผลงาน,ใช้งานด้วยกล้องจุลทรรศน์

4. ระบุไข่ตัวสั่นในการเตรียม ปฏิบัติตามกฎการคุ้มครองแรงงาน และปฏิบัติตามกฎอนามัยและระบาดวิทยา โหมด.

โครงสร้างบทเรียน:

ส่วนทางทฤษฎี:

Ø จุลภาค

ส่วนปฏิบัติ:

Ø การเตรียมเนทีฟสเมียร์ สเมียร์ขนาดใหญ่ สเมียร์คาโต การประเมินประสิทธิภาพ กล้องจุลทรรศน์

จุลภาค.

การรวบรวมและการส่งมอบวัสดุ

การวินิจฉัยขั้นสุดท้ายของหนอนพยาธิสามารถทำได้โดยคำนึงถึงผลลัพธ์เท่านั้น การวิจัยในห้องปฏิบัติการ- วิธีการหลัก การวินิจฉัยทางห้องปฏิบัติการโรคพยาธิคือการตรวจหาไข่หรือตัวอ่อนของพยาธิในอุจจาระ ปัสสาวะ เลือด และของเหลวทางชีวภาพอื่น ๆ ในระหว่างการตรวจด้วยกล้องจุลทรรศน์ วัสดุที่ใช้ในการวิจัยได้แก่ อุจจาระ สารต่างๆ ลำไส้เล็กส่วนต้น, เลือด, เสมหะ, เนื้อเยื่อตัดชิ้นเนื้อ และวัสดุอื่นๆ

การรวบรวมวัสดุเพื่อการวิจัยดำเนินการในภาชนะแก้วหรือพลาสติกที่สะอาดซึ่งมีทิศทางระบุชื่อของวัตถุ ในระหว่างการตรวจร่างกาย อนุญาตให้เก็บอุจจาระในถ้วยที่ทำจากกระดาษแว็กซ์หรือถุงพลาสติก

ควรส่งอุจจาระเพื่อการวิเคราะห์ไปที่ห้องปฏิบัติการไม่เกินหนึ่งวัน และหากสงสัยว่าเป็นโรค Strongyloidiasis ทันทีหลังจากการขับถ่าย หากกฎนี้ถูกละเมิด การวินิจฉัยเนื่องจากการทำลายไข่หรือตัวอ่อนมักจะกลายเป็นเรื่องยากหรือเป็นไปไม่ได้

เพื่อระบุไข่และตัวอ่อนของพยาธิบางชนิด มีการใช้วิธีการพิเศษ: วิธีบอร์มันน์, การขูดบริเวณรอบปาก, วิธีการเลอะลายนิ้วมือโดยใช้เทปกาว, การเพาะเลี้ยงตัวอ่อนบนกระดาษกรอง (วิธีฮาราดะและโมริ) เป็นต้น

ส่วนปฏิบัติ:

วิธีการทั่วไปในการตรวจอุจจาระเพื่อหาไข่พยาธิคือวิธีเนทีฟสเมียร์ การสเมียร์แบบหนาใต้กระดาษแก้ว และวิธีสเมียร์ขนาดใหญ่

เมื่อศึกษาไข่พยาธิภายใต้กล้องจุลทรรศน์แนะนำให้เปรียบเทียบ ภาพที่มองเห็นได้โดยมีลักษณะเป็นตัวกำหนดไข่พยาธิ

วิธีการสเมียร์แบบพื้นเมือง

อุปกรณ์:

สไลด์แก้ว

คิวเวทท์กว้าง

แท่งพลาสติก

ดินสอ;

สารละลายกลีเซอรีนที่เป็นน้ำ 50% (ผสมกลีเซอรีนกับน้ำกลั่นในปริมาณเท่า ๆ กัน)

เรือที่มีสารละลายโพลีเดส 0.5%

กล้องจุลทรรศน์.

ความก้าวหน้าของงาน

1. วางสไลด์ในคิวเวตต์และใส่หมายเลขสไลด์

2. ใช้สารละลายกลีเซอรอลในน้ำ 50% 2 หยดด้วยปิเปตที่ระยะห่าง 4 ซม. จากกันบนสไลด์แก้ว

3. ใช้แท่งอุจจาระขนาดเท่าหัวไม้ขีด (30-50 มก.) เติมลงในกลีเซอรีนหยดหนึ่งแล้วบดให้เป็นสารแขวนลอยที่สม่ำเสมอ

4. แต่ละสไลด์มีการเตรียมสเมียร์เนทีฟสองอันซึ่งไม่ควรรวมเข้าด้วยกันและไม่ถึงขอบเพื่อไม่ให้นิ้วของผู้ช่วยห้องปฏิบัติการเปื้อน มีการใช้แท่งใหม่สำหรับการทดสอบแต่ละครั้ง

5. ตรวจสอบการเตรียมการโดยไม่ใช้แผ่นปิดคลุมไว้ใต้กล้องจุลทรรศน์ (วัตถุประสงค์ 8x, ช่องมองภาพ 10-15x)

6. ในตอนท้ายของการศึกษา ให้จุ่มสารเตรียมลงในภาชนะที่มีสารละลายโพลีเดซิส 0.5%

วิธีการสเมียร์หนาใต้กระดาษแก้ว

วิธีนี้เสนอโดย K. Kato, M. Miur ในปี 1954 สเมียร์เป็นชั้นของอุจจาระที่ไม่เจือปนบนสไลด์แก้วกดใต้แผ่นกระดาษแก้วบาง ๆ ดูดความชื้นที่ชุบกลีเซอรีน

ข้าว. การเตรียมสเมียร์หนาใต้กระดาษแก้ว:

เอ - สเมียร์พื้นเมือง; b - กดก้อนอุจจาระที่คลุมด้วยกระดาษแก้วด้วยจุกยาง c - สเมียร์หนาใต้กระดาษแก้ว (อ้างอิงจาก Yu.A. Berezantsev และ E.G. Avtushenko, 1976)

อุปกรณ์:

คิวเวทท์กว้าง

แถบกระดาษแก้วขนาด 22x30 มม. เคลือบด้วยส่วนผสม Kato เป็นเวลา 24 ชั่วโมง

ส่วนผสม Kato (สารละลายมาลาไคต์กรีน 3% - 6 มล., สารละลายฟีนอล 6% - 500 มล., กลีเซอรีน - 500 มล., ส่วนผสม 3.5 มล. เพียงพอสำหรับ 100 แถบ)

ปลั๊กยางขนาดใหญ่

แหนบทางกายวิภาค

แท่งพลาสติก

ดินสอ;

กล้องจุลทรรศน์.

ความก้าวหน้าของงาน

1. วางสไลด์ในคิวเวตต์และใส่หมายเลขสไลด์

2. ใช้แท่งไม้ตักอุจจาระขนาดเท่าเมล็ดถั่ว (50-60 มก.) แล้ววางลงบนแผ่นกระจกตรงกลาง

3. ดึงแถบกระดาษแก้วเคลือบ Kato ออกจากขวดด้วยแหนบ แล้ววางลงบนตัวอย่างอุจจาระบนสไลด์แก้ว

4. กดกระดาษแก้วลงด้วยจุกยางเพื่อให้อุจจาระกระจายเท่าๆ กันโดยไม่รั่วซึมตามขอบของแถบ

5. ทิ้งน้ำยาเตรียมไว้จนใสเป็นเวลา 60 นาที แล้วตรวจดูด้วยกล้องจุลทรรศน์ (วัตถุประสงค์ 8-40x, ช่องมองภาพ 10x)

6. เมื่อสิ้นสุดการศึกษา ให้วางยาในภาชนะที่มีสารละลายโพลีเดส 0.5%

7. ถอดออก ที่ทำงาน, ล้างมือของคุณ.

วิธีการตีเส้นใหญ่

วิธีการนี้เสนอโดย Yu.A. Berezantsev และ E.G. Avtushenko ในปี 1973 สาระสำคัญของวิธีนี้ขึ้นอยู่กับการใช้กล้องจุลทรรศน์สองตาและสเมียร์ดั้งเดิมบนกระจกขนาด 6x9 ซม. ซึ่งช่วยให้ตรวจอุจจาระได้มากถึง 200-300 มก. พร้อม ๆ กัน

อุปกรณ์:

สไลด์ 6x9 ซม. และ 7x10 ซม.

แท่งพลาสติก

สารละลายกลีเซอรีน 50% (กลีเซอรีนและน้ำกลั่นในส่วนเท่า ๆ กัน)

เรือที่มีสารละลายโพลีเดส 0.5%

กล้องจุลทรรศน์;

คิวเวตเคลือบฟัน;

ดินสอ.

ความก้าวหน้าของงาน

1. วางสไลด์แก้วขนาด 7x10 ซม. ลงในคิวเวตต์และใส่หมายเลขสไลด์

2. จากนั้นวางสไลด์ขนาด 6x9 ซม. แผ่นที่สองไว้บนแต่ละสไลด์

3. หยดสารละลายกลีเซอรอล 50% 15-20 หยดลงบนสไลด์แก้วขนาด 6x9 ซม.

4.เอาไม้จิ้มลงไป สถานที่ที่แตกต่างกันอุจจาระขนาดเท่าถั่วเฉลี่ย (200-300 มก.) แล้วจุ่มลงในสารละลายกลีเซอรอล 50% บนสไลด์แก้ว

5. บดอุจจาระในกลีเซอรีนด้วยแท่งไม้จนมีลักษณะเป็นสารแขวนลอยสม่ำเสมอเพื่อให้พื้นที่ที่ใช้ได้ประมาณ 33-34 ซม. 2 อย่าปิดรอยเปื้อนด้วยแผ่นปิด

6. จับขอบกระจกขนาดใหญ่ 7x10 ซม. โดยทารอยเปื้อนขนาดใหญ่ไว้ (เพื่อไม่ให้นิ้วสกปรก)

7. ตรวจสอบสเมียร์ขนาดใหญ่ที่กำลังขยาย 34x (เลนส์ใกล้ตา 2x, เลนส์ใกล้ตา 17x) และ 50x (เลนส์ใกล้ตา 4x, เลนส์ใกล้ตา 12.5x) ในกรณีที่สงสัย จะมีการศึกษาโดยใช้กำลังขยายสูง

8. เมื่อสิ้นสุดการศึกษา ให้วางยาลงในภาชนะที่มีสารละลายโพลีเดส 0.5%

9.ทำความสะอาดสถานที่ทำงาน ล้างมือ

ด้วยวิธีการวิจัยนี้จะตรวจหาไข่พยาธิขนาดใหญ่ (พยาธิตัวกลม, พยาธิแส้ม้า, พยาธิปากขอ, พยาธิเข็มหมุด, พยาธิตัวตืด, taeniaids, fasciolas) พวกมันดูแตกต่างออกไปเล็กน้อยและต้องอาศัยประสบการณ์พอสมควรจึงจะมองเห็นพวกมันได้อย่างรวดเร็ว สเมียร์ขนาดใหญ่สามารถใช้ทดสอบไข่ที่แตกเป็นชิ้นและตัวอ่อนของปลาไหลได้ สเมียร์ขนาดใหญ่ประกอบด้วยวัสดุทดสอบมากกว่าสเมียร์ดั้งเดิมถึง 6-10 เท่า ประสิทธิภาพของมันสูงกว่าหลายเท่า

ข้อมูลที่เกี่ยวข้อง.

วัสดุสำหรับการวิจัย: อุจจาระ, ปัสสาวะ, สิ่งที่มีอยู่ในลำไส้เล็กส่วนต้น, เสมหะ, เลือด, ผิวหนัง, เดนไดรต์ในช่องท้อง, เนื้อเยื่อของกล้ามเนื้อ

วิธีการวิจัยด้วยกล้องจุลทรรศน์นั้นขึ้นอยู่กับการตรวจหาไข่พยาธิและตัวอ่อน ขึ้นอยู่กับวัตถุประสงค์ของการศึกษา พวกเขาจะแบ่งออกเป็นเชิงคุณภาพและเชิงปริมาณ

1.วิธีสเมียร์คาโต้หนาหลักการของวิธีนี้คือพบไข่พยาธิในอุจจาระหนา ๆ ล้างด้วยกลีเซอรีนและย้อมด้วยสีเขียวมาลาไคต์ วิธีนี้มีประสิทธิภาพมากที่สุดสำหรับโรค ascariasis, trichocephalosis, diphyllobothriasis, taeniasis และในระดับที่น้อยกว่าสำหรับพยาธิปากขอและพยาธิตัวตืดแคระ

3. วิธีการเสริมคุณค่า(โคโฟอิดา-บาร์เบรา) มีพื้นฐานมาจากหลักการให้ไข่ลอยอยู่ในสารละลายอิ่มตัว เกลือแกง- คุณสามารถพบไข่ของพยาธิตัวกลม พยาธิตัวตืด ออนโคสเฟียร์ เทนนิด และไข่พยาธิตัวกลมที่ไม่ได้รับการผสมพันธุ์

4. วิธีกาลันทาเรียน- หลักการเหมือนกับหลักการก่อนหน้า แต่ใช้สารละลายไนโตรเจนไนเตรตอิ่มตัวเป็นสารละลายลอยอยู่ในน้ำ

5. มี วิธีการพิเศษการตรวจอุจจาระเพื่อดูการปรากฏตัวของ fasciliasis, strongyloidiasis, โรคพยาธิปากขอ

6. วิธี Prianal และ Perianal-Rectalการวินิจฉัยโรค enterobiasis การขูดจะทำในตอนเช้า (ก่อนเข้าห้องน้ำและถ่ายอุจจาระ) หรือในตอนเย็นระหว่างนอนหลับ

สำคัญมากที่ต้องรู้

วิธีการง่ายๆ

วิธีมหภาค เมื่อตรวจอุจจาระ คุณจะพบพยาธิ หัว ส่วน และชิ้นส่วนของสโตบิลา ซึ่งปล่อยออกมาอย่างอิสระหรือหลังการถ่ายพยาธิ วิธีนี้แนะนำเป็นพิเศษในการระบุโรค enterobiasis, taeniasis และ taeniarynchosis

อุจจาระส่วนเล็กๆ ผสมกับน้ำในถาดแบนหรือในจานเพาะเชื้อ และเมื่อมองในที่มีแสงดีบนพื้นหลังสีเข้ม ให้ใช้แว่นขยายหากจำเป็น เพื่อกำจัดพยาธิและรูปแบบสีขาวที่น่าสงสัยทั้งหมดด้วยแหนบหรือปิเปต วัสดุที่เก็บรวบรวมจะถูกถ่ายโอนไปยังถ้วยอื่นที่มีน้ำหรือบนสไลด์แก้วในหยดกลีเซอรอลเจือจางหรือสารละลายโซเดียมคลอไรด์ไอโซโทนิกสำหรับการศึกษาต่อไป

เมื่อใช้วิธีการตกตะกอน ควรผสมอุจจาระทั้งหมดที่ทดสอบกับน้ำในกระบอกแก้ว จากนั้นจึงระบายน้ำชั้นบนสุดออกอย่างระมัดระวัง ซ้ำหลายครั้ง เมื่อของเหลวใส จะถูกระบายออก และตรวจสอบตะกอนในส่วนเล็กๆ ในอ่างแก้วหรือจานเพาะเชื้อ ตามที่ระบุไว้ข้างต้น

วิธีการใช้กล้องจุลทรรศน์เป็นวิธีหลักในการตรวจอุจจาระเพื่อตรวจหาไข่พยาธิหรือตัวอ่อน วิธีการต่างๆการศึกษาอธิบายไว้ด้านล่าง เพื่อเพิ่มความน่าเชื่อถือในการตรวจ สามารถทำซ้ำได้หลายครั้งต่อวัน หรือเว้นช่วง 1-3 วัน

วิธีการสเมียร์แบบพื้นเมือง การตรวจอุจจาระเป็นวิธีที่ใช้กันทั่วไปและเข้าถึงได้ทางเทคนิค ในเนทิฟสเมียร์คุณสามารถตรวจจับไข่และตัวอ่อนของพยาธิได้ทุกประเภท อย่างไรก็ตามหากจำนวนไข่ในอุจจาระมีน้อยก็ไม่สามารถหาได้เสมอไป ดังนั้นการตรวจอุจจาระโดยใช้ Native smear เท่านั้นจึงยังไม่สมบูรณ์และควรเสริมด้วยวิธีเสริมคุณค่า ประสิทธิภาพของการตรวจเนทิฟสเมียร์เพิ่มขึ้นอย่างเห็นได้ชัดโดยการดูสไลด์ 4 ภาพที่เตรียมจากตัวอย่างอุจจาระบนสไลด์ 2 สไลด์โดยไม่มีแผ่นปิด ทำให้สามารถตรวจอุจจาระทั้งหมดในปริมาณที่เท่ากันโดยประมาณได้เช่นเดียวกับวิธี Kato (ดูด้านล่าง)

อุจจาระผสมจำนวนเล็กน้อย (ขนาดเท่าหัวไม้ขีดไฟ) จะถูกทาบาง ๆ ด้วยแท่งไม้บนพื้นผิวของสไลด์แก้วในหยดสารละลายกลีเซอรีน 50% โดยปกติแล้วจะมีการเตรียมรอยเปื้อนสองอันไว้ในสไลด์เดียว สเมียร์จะถูกมองภายใต้กล้องจุลทรรศน์กำลังขยายต่ำ (เล่ม 8, ประมาณ 7) ในกรณีที่สงสัย จะมีการคลุมไว้ด้วยแผ่นปิดและตรวจสอบโดยใช้กำลังขยายสูง (กำลังขยาย 40)

ในการเตรียมสเมียร์เนทีฟขนาดใหญ่ ให้บดอุจจาระ 200-300 มก. (ขนาดเท่าเมล็ดถั่วขนาดใหญ่) บนแก้วขนาด 6x9 ซม. ในสารละลายกลีเซอรอลในน้ำ 50% 15-20 หยด มุมมองภายใต้กล้องจุลทรรศน์สามมิติแบบสองตา (มุม 4, ประมาณ 12.5 หรือ ob. 2, ประมาณ 17) ในแสงที่ส่องผ่านโดยไม่มีแว่นตาปิดบัง ในกรณีที่ไม่ชัดเจน คุณสามารถเปลี่ยนเลนส์เป็นกำลังขยายที่สูงขึ้นได้ ในรอยเปื้อนดังกล่าวไข่พยาธิขนาดใหญ่ที่มีสีจะมองเห็นได้ชัดเจนในขณะที่ไข่ใสของพยาธิตัวตืดแคระนั้นค่อนข้างแย่กว่านั้น วิธีนี้ไม่เหมาะกับการตรวจจับไข่ขนาดเล็ก ในเวลาเดียวกัน วัสดุจำนวนมากที่อยู่ระหว่างการศึกษาและขอบเขตการมองเห็นขนาดใหญ่ที่มีความชัดลึกสูง ช่วยให้มั่นใจได้ถึงประสิทธิภาพที่สำคัญของการปรับเปลี่ยนนี้ เมื่อเปรียบเทียบกับสเมียร์แบบดั้งเดิมทั่วไป

สเมียร์หนาด้วยกระดาษแก้ว (วิธี Kato) มีประสิทธิภาพมากกว่าการศึกษาสเมียร์แบบเนทีฟ แต่ยังต้องใช้ร่วมกับวิธีการเสริมสมรรถนะด้วย ตรวจพบไข่ของพยาธิทุกประเภทอย่างไรก็ตามในการตรวจหาไข่ของพยาธิตัวตืดแคระ (ไข่ใส) หรือ opisthorchid (ไข่เล็ก) ช่างเทคนิคในห้องปฏิบัติการจะต้องระมัดระวังเป็นพิเศษที่จะไม่พลาด (รูปที่ 21)

วิธีการนี้ขึ้นอยู่กับการตรวจหาไข่พยาธิในสเมียร์อุจจาระหนาล้างด้วยกลีเซอรีนและย้อมด้วยสีเขียวมาลาไคต์ กระดาษแก้วพรีไฮโดรฟิลิกถูกตัดเป็นจานขนาด 20 x 40 มม. แล้วแช่ในส่วนผสม Kato (6 มล. ของสารละลายมาลาไคต์กรีนที่เป็นน้ำ 3%, กลีเซอรีน 500 มล., สารละลายฟีนอล 6% 500 มล.) ส่วนผสม 3-5 มล. เพียงพอสำหรับ 100 จานซึ่งพร้อมใช้งานในหนึ่งวันและสามารถเก็บไว้ในส่วนผสมเดียวกันในภาชนะที่ปิดสนิทที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 6 เดือน ในกรณีที่ไม่มีมาลาไคต์กรีน (แนะนำเพื่อลดความเมื่อยล้าของดวงตาสำหรับผู้ช่วยห้องปฏิบัติการ) และฟีนอล ( ยาฆ่าเชื้อ) คุณสามารถใช้สารละลายกลีเซอรอลที่เป็นน้ำเพียง 50% เท่านั้น ประสิทธิผลของการศึกษาจะไม่ลดลง

ข้าว. 20. วิธีเตรียมสเมียร์อุจจาระหนาด้วยกระดาษแก้วตามขะโตะ

ใช้อุจจาระ 100 มก. บนสไลด์แก้ว ปิดด้วยแผ่นกระดาษแก้วตามที่ระบุไว้ข้างต้น แล้วกดด้วยจุกยางเพื่อไม่ให้อุจจาระแพร่กระจายจากใต้กระดาษแก้ว กล้องจุลทรรศน์ที่กำลังขยายต่ำหรือสูงจะดำเนินการไม่เกิน 1 ชั่วโมง (ในสภาพอากาศร้อน - 30-40 นาที) หลังจากเตรียมสเมียร์ สาเหตุของความทึบของยาอาจเป็นชั้นอุจจาระหนาการประมวลผลแผ่นไม่ดีในส่วนผสม Kato หรือระยะเวลาที่ยาได้รับยาไม่เพียงพอภายใต้กระดาษแก้ว การล้างกลีเซอรีนเป็นเวลานานและทำให้การเตรียมการแห้งมากเกินไปทำให้ตรวจจับไข่ได้ยาก

วิธีการบิดตาม S.S. ชูลมาน. วิธีนี้เสนอสำหรับการตรวจหาตัวอ่อนของหนอนพยาธิ ซึ่งส่วนใหญ่เป็นสตรองไทลอยด์ในอุจจาระ ตรวจสอบเฉพาะอุจจาระที่ขับออกมาใหม่เท่านั้น 2-3 กรัมจะถูกถ่ายโอนไปยังขวดแก้วกวนด้วยแท่งแก้วเป็นวงกลมด้วยสารละลายทางสรีรวิทยาจำนวน 3-5 เท่าโดยไม่ต้องสัมผัสผนังของภาชนะ ไข่และตัวอ่อนของพยาธิสะสมอยู่ตรงกลาง หลังจากการผสมเสร็จสิ้น หยดที่ปลายแท่งจะถูกถ่ายโอนไปยังสไลด์แก้วอย่างรวดเร็ว ปิดด้วยแผ่นปิด และตรวจสอบด้วยกล้องจุลทรรศน์

วิธีการเพิ่มคุณค่า วิธีการเพิ่มปริมาณจะขึ้นอยู่กับความแตกต่างในความถ่วงจำเพาะของไข่และน้ำเกลือที่ใช้ ซึ่งช่วยให้ตรวจพบไข่ได้ในปริมาณเล็กน้อย หากความถ่วงจำเพาะของไข่มากกว่าความถ่วงจำเพาะของของเหลว ไข่ก็จะรวมตัวอยู่ในตะกอนซึ่งจะถูกตรวจสอบด้วยกล้องจุลทรรศน์ วิธีการตกตะกอนนี้ใช้สำหรับไข่ตัวสั่น ด้วยความถ่วงจำเพาะของสารละลายที่สูงกว่า ไข่จะลอยไปที่พื้นผิวของของเหลว จากนั้นจึงตรวจสอบฟิล์ม วิธีเหล่านี้เป็นวิธีการลอยน้ำ (ลอยน้ำ) ซึ่งมีประสิทธิภาพมากที่สุดในการตรวจจับไข่ของพยาธิปากขอ พยาธิแส้ม้า และพยาธิตัวตืดแคระ

วิธีการลอยตัว วิธีฟูลเลบอร์นอาศัยการลอยไข่พยาธิในสารละลายโซเดียมคลอไรด์อิ่มตัว ซึ่งมีความหนาแน่นสัมพัทธ์สูง (1.2) ซึ่งทำให้สามารถตรวจจับไข่ในปริมาณเล็กน้อยได้ วิธีนี้มีประสิทธิภาพมากกว่าการศึกษาสเมียร์พื้นเมืองถึงแม้ว่ามันจะซับซ้อนกว่าก็ตาม ข้อดีของวิธีนี้คือต้นทุนและการเข้าถึงต่ำ ขอแนะนำให้รวมการศึกษาวิธีเนทีฟสเมียร์กับวิธีฟูลบอร์นเข้าด้วยกัน

สารละลายอิ่มตัวเตรียมโดยการละลายโซเดียมคลอไรด์ 400 กรัมในน้ำ 1 ลิตรขณะเดือด ความหนาแน่นสัมพัทธ์ของสารละลายคือ 1.18-1.22 สารละลายจะถูกเก็บไว้ในขวดปิด ในการวิเคราะห์ ให้วางอุจจาระ 2-3 กรัมในขวดที่มีปริมาตร 30-50 มล. และในขณะที่คนด้วยแท่งไม้ สารละลายโซเดียมคลอไรด์อิ่มตัวจะถูกเติมลงไปเกือบด้านบน ใช้แถบกระดาษเพื่อกำจัดอนุภาคขนาดใหญ่ที่ลอยอยู่อย่างรวดเร็ว หลังจากผ่านไป 45-60 นาที หลังจากตกตะกอนด้วยห่วงลวดแล้ว ให้ลอกฟิล์มพื้นผิวออกแล้วเทลงในสไลด์แก้วโดยหยดสารละลายกลีเซอรอลในน้ำ 50% แทนที่จะเอาฟิล์มออกโดยใช้ห่วง คุณสามารถเพิ่มสารละลายลงในขวดที่ด้านบน ปิดด้วยกระจกสไลด์ บนพื้นผิวที่ไข่ที่ลอยอยู่ติดอยู่ กำลังเตรียมการหลายอย่าง นอกจากนี้ ยังมีการตรวจสอบการเตรียม 2-4 รายการจากตะกอน โดยรวบรวมด้วยปิเปตตาบนกระจกสไลด์ 2 ชิ้น นอกจากฟิล์มพื้นผิวแล้ว ยังจำเป็นต้องตรวจสอบตะกอนด้วย เนื่องจากไข่ของตัวสั่น, taeniids และไข่พยาธิตัวกลมที่ไม่ได้รับการผสมพันธุ์จะไม่ลอยอยู่ในสารละลายนี้ ไข่ของหนอนพยาธิจำนวนหนึ่งไม่ลอยขึ้นสู่ผิวน้ำในสารละลายเกลือทันที ดังนั้นหากจำนวนไข่พยาธิตัวตืดแคระสูงสุดปรากฏขึ้นหลังจากผ่านไป 15-20 นาที พยาธิตัวตืด - หลังจาก 1.5-2 ชั่วโมง พยาธิแส้ม้า - หลังจาก 2-3 ชั่วโมง

ดังนั้น ข้อดีของวิธีนี้ ได้แก่ ต้นทุนต่ำและพร้อมใช้งาน ข้อเสียคือต้องดูการเตรียมฟิล์มพื้นผิวและตะกอน ตลอดจนระยะเวลาในการตกตะกอน

วิธีการของ E.V. Kalantaryan ก็เป็นวิธีการเสริมคุณค่าเช่นกัน แต่มีประสิทธิภาพและง่ายกว่าวิธี Fulleborn ใช้สารละลายโซเดียมไนเตรตอิ่มตัวที่มีความหนาแน่นสัมพัทธ์ 1.38 ดังนั้นไข่ของหนอนพยาธิส่วนใหญ่จึงลอยและพบได้ในแผ่นฟิล์มบนพื้นผิวจึงไม่จำเป็นต้องตรวจสอบตะกอน

ในการเตรียมสารละลายโซเดียมไนเตรตอิ่มตัว เกลือโซเดียมไนเตรต 1 กิโลกรัม (โซเดียมไนเตรต) ละลายในน้ำ 1 ลิตรแล้วต้มจนละลายหมดและเกิดฟิล์มขึ้นบนพื้นผิว เทลงในขวดที่แห้งโดยไม่ต้องกรอง ในกรณีที่ไม่มีโซเดียมไนเตรตสามารถแทนที่ด้วยแอมโมเนียมไนเตรต (แอมโมเนียมไนเตรต) โดยละลาย 1.7 กิโลกรัมต่อน้ำ 1 ลิตร ความหนาแน่นสัมพัทธ์ของสารละลายที่ได้คือ 1.3 ซึ่งลดประสิทธิภาพลงเล็กน้อยเมื่อเปรียบเทียบกับสารละลายโซเดียมไนเตรต

ข้อดีของวิธีนี้: ไข่ของพยาธิส่วนใหญ่ลอยได้เร็วและพบได้ในฟิล์มพื้นผิวซึ่งไม่จำเป็นต้องตรวจสอบตะกอน ข้อเสียของวิธีนี้คือการขาดโซเดียมไนเตรตรวมถึงความจริงที่ว่าไข่ตัวสั่นและชั้นบรรยากาศ taeniid ไม่ลอยและยังคงอยู่ในตะกอน ต้องคำนึงว่าเมื่ออุจจาระถูกเก็บไว้ในสารละลายเป็นเวลานาน (มากกว่า 1-2 ชั่วโมง) ไข่ของพยาธิบางชนิดจะเริ่มบวมและตกลงโดยหายไปจากฟิล์มพื้นผิว

วิธีการตกตะกอน

วิธีการของ P. P. Goryachev ใช้หลักการตกตะกอนของไข่ ในกรณีนี้สเมียร์จะสว่างโดยไม่มีสิ่งเจือปนหยาบซึ่งทำให้ง่ายต่อการตรวจจับไข่สั่นขนาดเล็ก (opistorchid ฯลฯ ) ไข่ Opisthorch มีความถ่วงจำเพาะสูง จึงไม่ลอยอยู่ในน้ำเกลือ

สารละลายโซเดียมคลอไรด์อิ่มตัว 70-100 มล. เทลงในกระบอกที่มีเส้นผ่านศูนย์กลาง 2-3 ซม. แยกอุจจาระ 0.5 กรัมผสมน้ำ 20-25 มล. อย่างระมัดระวัง แล้วกรองผ่านช่องทางที่มีผ้ากอซ 2 ชั้นลงในกระบอกอย่างระมัดระวัง น้ำเกลือหลีกเลี่ยงการผสม (เพื่อให้เกิดการแบ่งเขตสองชั้นอย่างชัดเจน) หลังจากผ่านไป 2-3 ชั่วโมงชั้นบนสุดที่มีอุจจาระจะถูกดูดออกด้วยปิเปตและปล่อยน้ำเกลือที่เหลือให้ยืนเป็นเวลา 12-20 ชั่วโมงหรือหมุนเหวี่ยง ตะกอนจะถูกปิเปตบนสไลด์แก้ว ปิดด้วยแผ่นปิด และตรวจสอบด้วยกล้องจุลทรรศน์

วิธีการของ Goryachev ได้รับการเสนอเพื่อตรวจจับไข่ opisthorchid และปรากฏว่ามีประสิทธิภาพมากกว่าการศึกษาสเมียร์พื้นเมืองและวิธีการ Fulleborn ปัจจุบันสำหรับการวินิจฉัยโรค opisthorchiasis (clonorchiasis) แนะนำให้ใช้วิธีการของ Kato และ Kalantaryan เนื่องจากค่อนข้างมีประสิทธิภาพและง่ายกว่าในทางเทคนิค

วิธีการของ Krasilnikov ภายใต้อิทธิพลของสารลดแรงตึงผิวที่รวมอยู่ในองค์ประกอบ ผงซักฟอก(ผงซักฟอก) ไข่พยาธิจะถูกปล่อยออกมาจากอุจจาระและเข้มข้นในตะกอน

เตรียมสารละลายผงซักฟอกโลตัส 1% ไว้ล่วงหน้า ในการทำเช่นนี้ให้ละลายผง 10 กรัมใน 1 ลิตร น้ำประปา- หากไม่มี Lotus ก็ใช้ตัวอื่นได้ ผงซักผ้าแต่คุณจะต้องใช้แต่ละอย่างให้มากที่สุดเท่าที่จะละลายได้โดยไม่เกิดตะกอนในน้ำประปา 1 ลิตร เทสารละลายผงซักฟอก 20-30 มล. ลงในภาชนะแก้วที่มีความจุ 30-50 มล. วางอุจจาระส่วนเล็ก ๆ ไว้ที่นั่นแล้วผสมให้เข้ากัน อัตราส่วนอุจจาระต่อสารละลายควรอยู่ที่ประมาณ 1:20 อุจจาระควรอยู่ในสารละลายเป็นเวลาอย่างน้อย 24 ชั่วโมง ในช่วงเวลานี้ตะกอน 2-3 ชั้นจะก่อตัวที่ด้านล่าง ชั้นล่างประกอบด้วยอนุภาคหยาบและหนัก ไข่พยาธิจะสะสมอยู่ในชั้นกลาง และชั้นบนสุดเป็นสะเก็ดสีขาวเทา จากนั้นใช้ปิเปตเพื่อรวบรวมของเหลว 2-3 หยดจากชั้นกลางแล้วถ่ายโอนไปยังกระจกสไลด์ เตรียมการเตรียมการ 2 รายการไว้ในสไลด์เดียว ปิดด้วยแผ่นปิดและตรวจสอบด้วยกล้องจุลทรรศน์

วิธีการของ Krasilnikov ทำให้สามารถตรวจจับไข่ของหนอนพยาธิทุกชนิดที่ถูกขับออกมาทางอุจจาระได้

วิธีการตกตะกอนอีเทอร์-ฟอร์มาลินและวิธีการตกตะกอนทางเคมี แม้ว่าจะมีประสิทธิภาพสูง แต่ก็ต้องใช้แรงงานมาก โดยเฉพาะอย่างยิ่งในระหว่างการตรวจสอบมวล ดังนั้นจึงแนะนำให้ใช้วิธีอีเทอร์-อะซิติกมากกว่า หลังจากการบำบัดตะกอนด้วยสารเคมีเพิ่มเติมแล้ว จะช่วยให้ได้รับไข่พยาธิเกือบเท่านั้น ซึ่งทำให้ง่ายต่อการระบุไข่ตัวสั่นขนาดเล็ก วิธีการนี้ได้รับการพิสูจน์แล้วว่าใช้ได้เป็นสากล โดยสามารถระบุไข่ของพยาธิในลำไส้, ซีสต์โปรโตซัวในลำไส้ได้ทั้งหมด และยังสามารถใช้สำหรับ การหาปริมาณความรุนแรงของการบุกรุก

เทสารละลาย 10% 7 มิลลิลิตรลงในหลอดตวงสำหรับการหมุนเหวี่ยง กรดอะซิติกและเพิ่มอุจจาระ 1 กรัมไปที่เครื่องหมาย 8 มล. อุจจาระจะถูกผสมให้เข้ากันด้วยไม้จนได้ส่วนผสมที่เป็นเนื้อเดียวกันจากนั้นจึงกรองผ่านผ้ากอซสองชั้นลงในหลอดหมุนเหวี่ยงอีกหลอด (เพื่อให้หลอดทดลองใหม่ของสารละลายที่ทำให้เครียดมี 8 มล. อีกครั้งถ้าน้อยกว่านั้นคุณสามารถเพิ่มเติมได้ ล้างช่องทางด้วยผ้าพันแผลด้วยสารละลายกรดอะซิติก 10% โดยกรองสารละลายอุจจาระ) เติมอีเทอร์ 2 มล. ลงในหลอดทดลองนี้ (ไม่เกินเครื่องหมาย 10 มล.) ปิดฝาแล้วเขย่าแรง ๆ เป็นเวลา 30 วินาที ส่วนผสมถูกปั่นเหวี่ยงที่ 3000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 1 นาที (หรือ 2 นาทีที่ 1500 รอบต่อนาที) ชั้นตกตะกอน (ในรูปแบบของปลั๊กที่ส่วนบนของหลอดทดลอง) ถูกแยกออกจากผนังของหลอดทดลองด้วยแท่งไม้และระบายอย่างระมัดระวังพร้อมกับของเหลวเหนือตะกอน ตะกอน (โดยปกติมีขนาดเล็ก ไม่มีสี) จะถูกปิเปตลงบนสไลด์แก้ว ปิดด้วยแผ่นปิด และตรวจสอบด้วยกล้องจุลทรรศน์

การติดเชื้อพยาธิมักเกิดขึ้นผ่านอาหาร น้ำ และมือที่ไม่ได้ล้างมือที่ปนเปื้อน

วิธีการวินิจฉัยโรคพยาธิทั้งทางตรงและทางอ้อม

จนถึงปัจจุบันมีการพัฒนาวิธีการมากมาย การวินิจฉัยโรคหนอนพยาธิ แต่ทั้งหมดสามารถแบ่งออกเป็นสอง กลุ่มใหญ่: ทางตรงและทางอ้อม วิธีการวินิจฉัยโดยตรงรวมถึงการศึกษาที่ช่วยให้คุณสามารถระบุหนอนพยาธิ ชิ้นส่วน ตัวอ่อนหรือไข่ได้โดยตรง วิธีทางอ้อมในการวินิจฉัยโรคหนอนพยาธินั้นขึ้นอยู่กับการระบุลักษณะการเปลี่ยนแปลงรองของหนอนพยาธิชนิดใดชนิดหนึ่ง

วิธีการโดยตรงที่ได้รับความนิยมมากที่สุดในการวินิจฉัยโรคหนอนพยาธิคือวิธีการวิจัยแบบมหภาคและแบบจุลภาค

วิธีการวิจัยด้วยกล้อง Macrohelminthoscopic

คำถามผู้อ่าน

18 ตุลาคม 2556, 17:25 น สวัสดีตอนบ่าย. ฉันรู้สึกคันบริเวณทวารหนักมาเกือบปีแล้ว ไม่มี ความเจ็บปวด- บอกฉันว่าจะติดต่อใครและจะเป็นอย่างไร? ขอบคุณ

ถามคำถาม

วิธีการวิจัยไมโครพยาธิสโคป

วิธีการวิจัยทางภูมิคุ้มกัน

การวินิจฉัยการติดเชื้อพยาธิขึ้นอยู่กับการตรวจหาแอนติบอดีจำเพาะในเลือดในเลือดของพยาธิบางชนิด สำหรับการวิจัยทางภูมิคุ้มกันวิทยาจะใช้วิธีการสร้างเม็ดเลือดแดงทางอ้อม เอนไซม์อิมมูโนแอสเสย์, อิมมูโนอิเล็กโทรโฟรีซิส, การดูดซึมอิมมูโนและวิธีการตรวจเลือดทางซีรั่มอื่น ๆ

วิธีการวิจัยทางภูมิคุ้มกันใช้ในการวินิจฉัยโรคถุงลมโป่งพอง, echinococcosis, cysticercosis, ascariasis, schistosomiasis และโรคพยาธิอื่น ๆ

การวิเคราะห์เนื้อหาน้ำดีและลำไส้เล็กส่วนต้น

การตรวจชิ้นเนื้อ

การวินิจฉัยด้วยไฟฟ้า

การวินิจฉัยการเจาะเข็มด้วยไฟฟ้าจะขึ้นอยู่กับการวิเคราะห์ความต้านทานของผิวหนังเมื่อระคายเคืองจากความอ่อนแอ ไฟฟ้าช็อต- การวินิจฉัยด้วยไฟฟ้าสำหรับโรคหนอนพยาธิที่สงสัยสามารถทำได้สองวิธี: โดยใช้วิธี Voll หรือใช้การทดสอบด้วยคลื่นสะท้อน

วิธีการวิจัยด้วยเครื่องมือ

สำหรับโรคพยาธิก็ดำเนินการเช่นกัน การตรวจอัลตราซาวนด์, FEDGS และการวินิจฉัยคอมพิวเตอร์ วิธีการเหล่านี้ทำให้สามารถระบุระดับความเสียหายที่เกิดจากพยาธิรวมทั้งกำหนดสภาพของอวัยวะแต่ละส่วนได้